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- 作者:薛开先|发布时间:2013-06-20|浏览量:1408次
近年来以下一代测序技术(next-generation sequencing ngs)为代表的、大规模、高通量基因组技术的迅速发展,对人类表基因组的认识不断深化,促进了该研究领域的新发现,和对重要研究问题的重新认识[1-3] ;同时为癌症病因、诊断、预防和制定新的治疗策略提供了新的机遇[1]。现对其中一些重要进展简要述评。江苏省肿瘤医院肿瘤内科薛开先
1 概述
1.1 基因组与表基因组 基因组是机体遗传信息的总和,在哺乳动物是单倍体(全套)染色体组,其中包括编码(基因)和非编码(但可编码调节rna等)的dna序列,是性状发育和疾病易感性的重要内因。在个体发育和疾病发生中,不同性质、动态的环境因素,通过表基因组作用于相对静态的基因组,在它们不断的相互作用中,性状形成和包括癌症在内的各种疾病发生;近年来在这些复杂的互作中,表基因组作为介导和重要内因,其作用机制和意义受到日益关注[1,4,5]。
表基因组是遗传信息载体?染色质生化修饰的总和。在个体发育中胚胎细胞具有相同的基因组,但在表遗传学机制调控下,通过分化产生不同结构、功能的组织细胞,它们彼此之间具有各别的表基因组,故表基因组是调控基因表达的模式,也是一类细胞的总体表遗传学状态。可见,在胚胎发育中一种基因组可以产生许多不同类型的表基因组[6,7]。
与基因组比较,表基因组更为动态,这反映了细胞处于不同时空时的功能状态。这一动态改变是受表基因组可逆的共价修饰如dna甲基化和组蛋白修饰所调控;另外一些机制是非共价修饰如微rna和染色质重塑复合物等。目前许多作者认为,表基因组是由dna甲基化、组蛋白修饰、染色质构型和的非编码rna组成;如从基因组水平进行研究,它们就分别构成了dna甲基化组、组蛋白修饰组以及小rna组等,目前研究最多的是甲基化组[8-10]。
1.2 dna甲基化组 dna甲基化是首先发现的、其复制机制比较明确的一种表遗传修饰。dna甲基化是真核基因组的普遍的特征,并是细胞分化过程和转录潜能调控的基本且重要的表遗传学层次。 dna甲基化模式能被遗传,但又是动态的,可以受到环境、饮食和衰老的影响,在疾病发生中被紊乱。在哺乳动物基因组正常的dna甲基化模式,对发育和健康有重要意义[11-13]。
dna甲基化组是检测涵盖整个基因组的甲基化胞嘧啶组成与分布状况,并研究这些特征与基因表
达、细胞分化、衰老和肿瘤等疾病发生的关系。长期来由于技术的限制,只能在个别或少数基因水平进行研究。近年来由于下一代测序等新技术的开发,再加上分子生物技术,使之有可能获得单核苷酸分辨水平的、全基因组dna修饰的特征谱,分析研究后有了新发现,真核生物具有高度保守的、基因体(gene body)的高度甲基化,以及以往曾未关注序列中存在的dna甲基化;还重新确认存在另一种修饰的碱基:5-羟甲基胞嘧啶。这些发现将有助于进一步阐明dna甲基化组的正常和病理功能[12,13]。
1.3 新研究方法的开发 癌症的发生是遗传学和表遗传学改变积累的结果,细胞的癌变应在基因组水平阐明相关基因在功能上如何相互作用,决定了肿瘤启动和演进的不同生物学和临床路径;这就需要进行全面、综合的遗传学和表遗传学分析,包括30亿核苷酸基因组中相关区域的测序;并在单核苷酸分辨率水平上,确定在不同类型肿瘤的0.28亿cpg二核苷酸的甲基化状态和组蛋白修饰等,而以往的测序方法的昂贵经费和技术上局限性,不可能完成这样的研究[14,15]。
2005年大规模并行焦磷酸测序平台的出现,进入了称为下一代测序的新时代,这些使遗传学和表遗传学研究大为改观,因为一次实验可产生数亿碱基的序列信息,比以往常用的、双脱氧链终止测序法的效率提高了100多倍;同时检测成本大幅度下降,据估计不久即可实现,约需1000美元就可完成对个体基因组的测序[15-17]。
下一代测序技术将表基因组研究带到现代科学研究的前沿。大规模并行测序效率与创新的分子和计算机动技术偶联,就能以仅在几年前难以想象的分辩率分析表基因组。如结合用于检测全基因组组蛋白修饰,提高微阵列为基础传统方法(chip-chip)效率;同样应用下一代测序技术完成了第一个人类dna甲基化组作图。更重要的是利用下一代测序技术,dna甲基化和组蛋白修饰的研究取得了新发现,并改善了我们关于人类生物学和疾病的知识,例如非cg的胞嘧啶甲基化和5-羟甲基胞嘧啶的发现等,这些将在下文简介[18,19]。
2 表基因组与环境和疾病
2.1 环境表基因组 环境表基因组是研究环境对表基因组的影响,以及这些因素对人类健康的联合效应。积累的资料表明,表基因组可作为环境与基因组间相互作用的界面,并通过表遗传学的分子机制,将环境和基因型与表型和疾病连接起来[20-22]。
表基因组介导了动态的环境和静态的基因组之间的连接。基因组的dna序列是遗传决定的,在所有的组织中都相同;表基因组在发育过程中塑造,通过高度组织化的过程,形成了机体不同类型组织细胞的、基因表达编程的多样性;同时表基因组是一个灵敏的反应系统,主要通过dna甲基化、组蛋白修饰和小调节rna等表遗传学改变,感知和反映环境的变化。表遗传变异与基因多态性一样具有类似的后果,导致基因功能的改变,并在随后的生命过程中保持[23,24]。
在由表基因组介导的、基因组与其环境相互作用的复杂网络中,转录因子、染色质和染色质修饰酶是其组成要素,其中dna序列参与结构域水平的染色质组织化;转录因子识别、结合于特殊的dna序列,并通过蛋白质间相互作用,募集染色质调节因子至特定基因;参与表遗传学调控修饰的关键成分是蛋白质修饰酶家族,它们对许多代谢和环境因子是敏感的,通过形成适当的表遗传学修饰,调控染色质的结构和功能。这些酶和“阅读”这些修饰的蛋白质构成了一个复杂的系统,藉此环境因子如化学毒物和食物成分能直接影响基因表达的模式[25-27]。
2.2 表基因组与疾病 许多环境因素包括从营养到环境毒素,在发育关键期能促成表遗传学改变,例如dna甲基化模式的改变能在细胞分裂后保留,因此改变模式随着时间的推移而积累,结果促成了细胞群体的、持久的表基因组改变,从而改变基因表达模式和细胞表型。这些表基因组状态改变不仅可影响日后、甚至后代的成年疾病的发生和表型[20,22]。
在发育敏感或关键期,营养或代谢编程呈现发育可塑性,即同一种基因型在应答不同环境时,可产生维持终生的、在一定范围内的不同生理状态和形态特征。发育关键期包括怀孕、新生儿发育、青春和老年期,因为这些生命阶段对环境改变比较敏感,尤其是早期发育的胎儿,最易受到环境因素的影响,因为在早期发育期dna合成速率高,对正常组织发育所必需的、精致的dna甲基化模式正在建立中。已有研究表明,在怀孕和新生儿阶段,营养和其他环境因素影响细胞可塑性, 因此改变了对成年心血管疾病、2型糖尿病、肥胖症和其他慢性病的易感性[28]。
动态的表基因组不仅应答发育关键期、而且也应答整个生存期的环境信号,不仅熟知的化学品、而且所承受社会行为的影响如母亲关照等都能影响表基因组。接触的不同环境因子可能导致表型的多样性,以及对疾病和行为病征的不同易感性。表遗传学状态的个体差异也影响对异生物质的易感性,随着肿瘤表遗传学研究的深入,认识到表遗传学机制对异生物质毒性作用研究的重要性,为了人类的安全,可以期待在不久的未来,表遗传学将进入化学品的安全性评价体系[5]。
3 癌症表基因组的研究
3.1 癌症的表基因组改变 细胞核内的dna甲基化、组蛋白修饰和染色质高阶组织化是表基因组的组成部分,其中染色质高阶组织化包括核小体定位和染色质结构域的核内定位,这些使复杂性呈指数增加。在发育、分化和成体阶段,不同组织基因表达的表遗传学调控是细胞类型特异性的,呈现不同的表基因组状态。包括癌症在内的各种疾病,几乎无一例外地发生表基因组状态改变。已如上述,由于近年来高通量新技术的开发,提供了快速、可靠和经济的全表基因组分析的方法[29],促进这一领域的研究,现以几种常见癌症为例,简介癌症表基因组研究的一些进展。
大肠癌是异质性疾病。对125例大肠癌和29份邻近组织,作全基因组dna特征谱分析,区分出四种不同生物学特性的亚型,显示独有的遗传学和临床特点。① 高cpg岛促甲基化表型 (cpg island methylator phenotype cimp)亚型:同时有多个基因存在特别高频率的、癌特异性的高甲基化,并与mlh1 dna高甲基化和braf突变呈现强相关;② 低cimp亚型:富集kras突变;③ 非cimp肿瘤,特有显著高频率的tp53突变,肿瘤多发生在末端结肠;④非cimp肿瘤,但显示有低频率的、癌特异性的dna高甲基化和基因突变,肿瘤显著多见于直肠。进一步在高cimp、加上有启动子高甲基化的肿瘤中,鉴定出下调表达超过两倍的112基因。这代表在高cimp肿瘤中获得启动子高甲基化基因的7%。感兴趣的是,48/112基因在非cimp亚型中也被转录下调,但这不能归因于启动子高甲基化[30]。
应用甲基化dna免疫沉淀结合高通量测序,研究了8株人乳腺癌细胞系和正常人类乳腺上皮细胞的全基因组dna甲基化特征,分析可产生无偏的、几乎涵盖整个基因组的dna甲基化图谱,并具有足够的深度和分辨率。与人乳腺上皮细胞相比,乳腺癌细胞系最显著的特点是显著地降低了甲基化水平,特别是在cpg 贫乏区域;高甲基化优先发生在富含cpg基因的相关的区域,与转录起始位点的距离无关。我们还研究了mcf7细胞从上皮到间质转化过程中的甲基化组的改变,主要与基因连接的cpg富集区的、甲基化模式的特异性改变相关。此外在相关基因区域约40%上皮细胞特异性甲基化模式,改变成典型的间质细胞模式,显示dna甲基化对细胞类型特异性的调控[31]。
3.2表基因组与致癌作用 现以与生活方式相关的吸烟与过量饮酒为例,说明它们的致癌作用与引发的表基因组改变密切相关。
正常人体小呼吸道上皮细胞和永生人支气管上皮细胞系,在有或无香烟烟雾冷凝物(cigarette smoke condensate csc)培养基中培养9个月。western印迹分析表明,csc介导的、剂量和时间依赖性的h4k16ac和h4k20me3减少,同时增加h3k27me3的相对水平;这些组蛋白的改变与降低的dna甲基转移酶1(dnmt1)表达和增加的dnmt3b表达相一致。焦磷酸测序和定量rt - pcr实验结果显示,时间依赖性的d4z4、nbl2和line - 1重复dna序列的低甲基化;h19, igf2, mage-a1和 d mage-a3的表达上调; wnt信号激活以及在人类肺癌经常沉默的、肿瘤抑制基因如rassf1a和β?rar的高甲基化。在从csc暴露永生人支气管上皮细胞衍生出软琼脂克隆,基于阵列法的dna甲基化分析,确定了额外、新的dna甲基化靶标,还在这些细胞中鉴定出csc基因表达的特征谱。csc诱发的基因组低甲基化和局部dna的高甲基化,与在软琼脂克隆形成的急剧增加相一致。上述数据说明,在培养的呼吸道上皮细胞,吸烟诱发了癌症相关表基因组的改变;提示吸烟致癌与表基因组改变密切相关32]。
叶酸是b族维生素的成员,是嘌呤和嘧啶的合成以及基本生物活性物质的甲基化所需要的,后者包括磷脂、dna和神经递质。哺乳动物不能从头合成叶酸,因此一个有效的肠道吸收和运输过程是必需的。叶酸摄取和运输的任何损害可导致叶酸缺乏的状态。研究表明,乙醇过多摄入是叶酸缺乏的主要原因,可引起肠吸收不良、改变肝胆代谢、增强结肠代谢和肾排泄。维持细胞的叶酸内稳态,对于一碳转移反应是至关重要的,后者是dna合成和生物甲基化反应所必需的。甲基化是基因表达、维持dna的完整性和稳定性、染色质修饰和突变发生中的重要的表遗传决定因素。乙醇影响dna甲基化的机制,除可通过引发叶酸缺乏影响dna甲基化外,乙醇还可通过直接与一碳代谢的相互作用,损害甲基合成;以及影响调节s -腺苷甲硫氨酸(最主要的甲基供体)dna合成的酶。因此,乙醇可通影响生物分子甲基化的能力,从而影响包括癌症在内的多种疾病的发病风险[33]。
3.3 表基因组与肿瘤的药物开发和化学预防 表遗传学是研究没有dna序列变化的、可遗传的表型改变。表遗传学机制通过对染色质结构基质成分:dna、组蛋白、非组蛋白和ncrna的修饰,介导对基因沉默和激活的调控,改变基因表达模式,进而显著改变细胞表型。表遗传学机制在肿瘤发生和演进中起重要作用,而引发的肿瘤表基因组改变是潜在可塑的,这就为肿瘤表遗传学治疗和预防提供了理论基础[34,35]。
未来的药物设计和新疗法的开发,依赖于我们揭示正常和疾病状态的、表基因组复杂性的能力。在胚胎发生和发育中,适当的表遗传调控是正常分化的关键;相反,不正常的表遗传调控是癌症、糖尿病和心脏病等复杂疾病的特征。表遗传学治疗的应用范围广泛,从癌症药物治疗到诱导建立多能干细胞。要创建更特异和有效的治疗方法,这需要更全面地理解表基因组景观(epigenomic landscapes)[35]。
目前已有多种基于表遗传学原理合成的药物,可以降低dna高甲基化和组蛋白去乙酰化,正处于临床前和临床试验之中,然而这些化学物质一般都有较大的毒性,并且没有基因的特异性,故近来较多作者研究,将能调整表遗传学事件的生物活性物质用于化学预防[36]。
已报告的、作用机制在于表基因组的化学预防因子,包括微营养素有叶酸、硒、类维生素a和维生素e等;来自绿茶、苹果、咖啡和其他食物有多酚类和丁酸盐等;来自大豆的染料木黄酮,来自植物食品的异硫氰酸盐类、来自姜黄根的姜黄素、来自葡萄的白藜芦醇和来自十字花科的蔬菜莱菔硫烷等。其中影响去乙酰化酶(sirtuin )活性的化合物有白藜芦醇,组蛋白乙酰化抑制剂有鸡腰果酸和熊去氧胆酸等,以及相对研究较少的组蛋白赖氨酸甲基化的调节剂有毛壳素、多胺类似物和n-3多不饱和脂肪酸等[34,36,37]。
参考资料
1. baylin sb, jones pa. a decade of exploring the cancer epigenome ? biological and translational implications. nat rev cancer. 2011; 11(10): 726-734.
2. chari r. thu kl. wilson im. lockwood ww. et al. integrating the multiple dimensions of
genomic and epigenomic landscapes of cancer. cancer metastasis reviews. 2010; 29(1): 73-93.
3.shu w, chen h, bo x, et al. genome-wide analysis of the relationships between dnasei hs, histone modifications and gene expression reveals distinct modes of chromatin domains. nucleic acids res. 2011; 39(17): 7428-7443.
4.薛开先. 表遗传学与人类疾病和健康. 国际遗传学杂志. 2010; 33(4): 251-256.
5.szyf m. the dynamic epigenome and its implications in toxicology. toxicol sci. 2007; 100(1): 7-23.
6. www.epigenome-noe.net/consulting/glossary.php 下载:2011/11/08
7.chik f, szyf m, rabbani sa. role of epigenetics in cancer initiation and progression. adv exp med biol. 2011; 720: 91-104.
8.lechner m, boshoff c, beck s. cancer epigenome. adv genet. 2010; 70: 247-276.
9.chik f, szyf m, rabbani sa. role of epigenetics in cancer initiation and progression. adv exp med biol. 2011; 720: 91-104.
10.陆祖宏. 表基因组学. 见: 薛开先主编. 肿瘤表遗传学. 北京: 科学出版社. 2011; 156-166.
11.pelizzola m, ecker jr. the dna methylome. febs lett. 2011; 585(13): 1994-2000.
12.ndlovu mn, denis h, fuks f. exposing the dna methylome iceberg. trends biochem sci. 2011; 36(7): 381-387.
13.wong e, wei cl. genome-wide distribution of dna methylation at single-nucleotide resolution. prog mol biol transl sci. 2011; 101: 459-477.
14.brena rm, costello jf. genome-epigenome interactions in cancer. hum mol genet. 2007;16 spec no 1: r96-105.
15.voelkerding kv, dames sa, durtschi jd. next-generation sequencing: from basic research to diagnostics. clin chem. 2009r; 55(4): 641-658
16.haas j, katus ha, meder b. next-generation sequencing entering the clinical arena. mol cell probes. 2011 sep 8. [epub ahead of print]
17.pareek cs, smoczynski r, tretyn a. sequencing technologies and genome sequencing. j appl genet. 2011; 52(4): 413-435.
18.hirst m, marra ma. next generation sequencing based approaches to epigenomics. brief functgenomics. 2010; 9(5-6): 455-465.
19.ku cs, naidoo n, wu m, et al. studying the epigenome using next generation sequencing. j med genet. 2011 sep 8. [epub ahead of print]
20.skinner mk. environmental epigenomics and disease susceptibility. embo rep. 2011; 12(7): 620-622.
21.attig l, gabory a, junien c. nutritional developmental epigenomics: immediate and long-lasting effects. proc nutr soc. 2010; 69(2): 221-231.
22.barros sp, offenbacher s. epigenetics: connecting environment and genotype to phenotype and disease. j dent res. 2009; 88(5): 400-408.
23.mcgowan po, szyf m. environmental epigenomics: understanding the effects of parental care on the epigenome. essays biochem. 2010; 48(1): 2752-87.
24.bernal aj, jirtle rl. epigenomic disruption: the effects of early developmental exposures. birth defects res a clin mol teratol. 2010; 88(10): 938-944.
25. straub t, becker pb. dna sequence and the organization of chromosomal domains. curr opin genet dev. 2008; 18(2): 175-180.
26. turner bm. environmental sensing by chromatin: an epigenetic contribution to evolutionary change. febs lett. 2011; 585(13): 2032-2040.
27. thorne jl, campbell mj, turner bm. transcription factors, chromatin and cancer. int j biochem cell biol. 2009; 41(1): 164-175.
28.dolinoy dc, jirtle rl.environmental epigenomics in human health and disease. environ mol mutagen. 2008; 49(1): 4-8.
29.gargiulo g. minucci s. epigenomic profiling of cancer cells. the international journal of biochemistry & cell biology. 2009;41(1): 127-135.
30. hinoue t, weisenberger dj, lange cp, et al. genome-scale analysis of aberrant dna methylation in colorectal cancer. genome res. 2011 jun 9. [epub ahead of print]
31.ruike y. imanaka y. sato f. et al. genome-wide analysis of aberrant methylation in human breast cancer cells using methyl-dna immunoprecipitation combined with high-throughput sequencing. bmc genomics. 2010; 11(1): 137.
32.liu f. epigenomic alterations and gene expression profiles in respiratory epithelia exposed to cigarette smoke condensate. oncogene. 2010;29(25): 3650-3664.
33.hamid a, wani na, kaur j. new perspectives on folate transport in relation to alcoholism-induced folate malabsorption--association with epigenome stability and cancer development. febs j. 2009; 276(8): 2175-2191.
34.薛开先. 肿瘤表遗传学临床应用的研究. 国际遗传学杂志. 2011; 34(4): 217-222
35.hamm ca, costa ff. the impact of epigenomics on future drug design and new therapies. drug discov today. 2011; 16(13-14) :626-635.
36. khan si, aumsuwan p, khan ia, et al. epigenetic events associated with breast cancer and their prevention by dietary components targeting epigenome. chem res toxicol. 2011 oct 12. [epub ahead of print]
37.huang j, plass c, gerhäuser c. cancer chemoprevention by targeting the epigenome.
curr drug targets. 2010 dec 15. [epub ahead of print]
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